Секреты производства антифриза: бизнес идея
Производить и продавать выгоднее, чем только продавать – это общее правило. Оптовые базы, сети автомагазинов, АЗС и СТО, логистические компании и автопредприятия создают вспомогательные производства с разными задачами – снижение внутренних издержек, увеличение продаж или маржи, постоянство качества продукта или независимость от поставщиков. Как правило, под такое производство покупается не просто оборудование, а готовое бизнес-решение.
Сегодня мы рассмотрим, как организовать производство эксплуатационных жидкостей – антифриза, тосола, стеклоомывающей жидкости и автомоющих средств. За консультацией мы обратились в ООО «Комплексные системы» – эта компания предлагает решения «под ключ», включающие оборудование, рецептуру, сопроводительные документы, техническую и сырьевую поддержку. Опыт «Комплексных систем» состоит из более чем 1000 внедрений комплексов по производству жидкой автохимии, причем не только в России, а и в бывших республиках СССР, и даже в Монголии, Нигерии и Китае.
Директор компании охотно делится информацией, и мы широко использовали предоставленные им данные при подготовке статьи.
1. Что главное?
2. Регистрация и организация производственного участка
3. Цех
4. Персонал
5. Технология производства
6. Секрет не в уникальной технологии
Что главное?
Самая важная задача – исследовать рынок и правильно оценить объемы производства и его рентабельность. Автомобильный рынок России растет и будет расти еще как минимум несколько лет, а с ним – потребность в эксплуатационных жидкостях. Однако ситуация зависит от региона и многих других факторов. Здесь невозможно дать точные указания: каждое предприятие должно само оценить риски.
«Ясно одно – десять тонн тосола в месяц – это слишком мало, чтобы в разумный срок получить возврат инвестиций, – рассуждает директор «Комплексных систем» Андрей Караваев. – Порядок 50 тонн в месяц – та планка, от которой надо начинать. Повысить загрузку оборудования можно, выпуская линейку автохимии – два-три варианта антифриза/тосола, стеклоомывающую жидкость, автошампунь».
Сроки окупаемости вложений сугубо индивидуальны и могут варьироваться от двух недель до шести месяцев.
Лучше всего, если результатом мониторинга рынка станет договоренность о сбыте готовой продукции. Напоследок заметим, что предприятие, открывающее такое производство, создает новые рабочие места в своем регионе, а потому может получить поддержку государственных инвестиционных программ. Не стоит бояться слов «подвальное производство»: качество готового продукта не будет уступать даже лидирующим производителям, достаточно точно следовать технологии.
Регистрация и организация производственного участка
Производство рассматриваемой автохимии не требует лицензирования, поэтому оформление участка для большинства управленцев будет включать только знакомые процедуры: получение разрешительных документов в пожарной, санитарной и экологической инспекциях; регистрация технических условий в санитарной инспекции; оформление торговой марки.
Цех
Рассмотрим требования контролирующих инстанций к производственному помещению.
Оно должно удовлетворять третьему классу пожарной безопасности, что требует назначения ответственного за помещение. Оборудование включает огнетушители, пожарный щит и ящик с песком. Сигнализация не входит в перечень обязательного оснащения. С экологической инспекцией еще проще – производство может быть полностью безотходным, о чем дальше будет сказано подробнее. По санитарным же требованиям помещение придется в обязательном порядке оснастить вытяжкой над установкой и рукомойником.
Насколько большим должен быть цех? Хотя сама установка занимает площадь около 10 кв. м., минимальная рекомендуемая площадь составляет 50 кв. м. Пустые канистры, концентрат и присадки могут храниться в неотапливаемом помещении и даже на открытом воздухе, а отлаженные транспортные потоки допускают территориальное разделение складских и производственных площадей. Однако директор «Комплексных систем» Андрей Караваев считает, что оптимальная площадь – 300-500 кв. м.
Персонал
Обслуживать участок будут, в зависимости от объемов производства, 1-3 человека и более.
Уровень подготовки – среднетехническое образование, поскольку при покупке готового бизнес-решения, как в случае ООО «Комплексные системы», технология производства описана в деталях. Четкое соблюдение инструкций гарантирует превышение минимальных показателей ГОСТ в несколько раз.
Замечено, что с разливом готовой продукции лучше справляются женщины – это также следует учитывать при подборе персонала.
Если производительность у вас будет большая то целесообразно приобрести у «Комплексных систем» автоматическую или полуавтоматическую линию для розлива авто жидкостей в тару от 0,5 литров до 10 литров, производительность 2000 литров в час и более
Технология производства
Почему все три группы жидкостей – охлаждающие, стеклоомыватели, шампуни – делаются на одном оборудовании? Дело в том, что технология производства состоит в смешивании в разных пропорциях подготовленной воды, концентрата и пакета присадок. Следует лишь оговориться, что для производства автошампуня на одной установке с тосолом и стеклоомывателем потребуется дополнительный реактор, поскольку промывка оборудования после автошампуня – процесс, затратный по времени.
Обессоленная вода – обязательный компонент для всех трех групп продукции, и технология подразумевает нагрев смеси. Экономию на электроэнергии можно получить, используя пароконденсат ТЭЦ. Если же используется холодная подготовленная вода (система фильтрации), реактор придется дополнительно оборудовать нагревательными элементами и учесть повышенные затраты электроэнергии в себестоимости.
Производство не создает сбросов загрязненной воды. К примеру, при переходе от производства тосола к антифризу воду, использовавшуюся при промывке, можно хранить и использовать при обратном переходе на тосол. Даже проливы, неизбежные при разливе продукции, не особо страшны: оснастив установку поддоном, пролитую жидкость можно собрать, отфильтровать и вернуть в технологический цикл.
Секрет не в уникальной технологии
Учесть все нюансы в рамках одной статьи невозможно, как невозможно начать с нуля бизнес и ни разу не наступить на грабли.
Вот почему спросом пользуется не оборудование, а бизнес-решение «под ключ». Если качество поддержки высокое, даже люди, далекие от автомобильного бизнеса, могут добиться успеха с первой попытки.
При всей простоте технологии более половины контрактов на поставку оборудования «Комплексные системы» превратились в постоянных клиентов. Секрет не в технологии. Просто главный продукт компании – не станки, а знание, как обойти вышеупомянутые грабли.
Секреты производства антифриза: бизнес идея
Производить и продавать выгоднее, чем только продавать – это общее правило. Оптовые базы, сети автомагазинов, АЗС и СТО, логистические компании и автопредприятия создают вспомогательные производства с разными задачами – снижение внутренних издержек, увеличение продаж или маржи, постоянство качества продукта или независимость от поставщиков. Как правило, под такое производство покупается не просто оборудование, а готовое бизнес-решение.
Сегодня мы рассмотрим, как организовать производство эксплуатационных жидкостей – антифриза, тосола, стеклоомывающей жидкости и автомоющих средств.
За консультацией мы обратились в ООО «Комплексные системы» – эта компания предлагает решения «под ключ», включающие оборудование, рецептуру, сопроводительные документы, техническую и сырьевую поддержку. Опыт «Комплексных систем» состоит из более чем 1000 внедрений комплексов по производству жидкой автохимии, причем не только в России, а и в бывших республиках СССР, и даже в Монголии, Нигерии и Китае. Директор компании охотно делится информацией, и мы широко использовали предоставленные им данные при подготовке статьи.
1. Что главное?
2. Регистрация и организация производственного участка
3. Цех
4. Персонал
5. Технология производства
6. Секрет не в уникальной технологии
Что главное?
Самая важная задача – исследовать рынок и правильно оценить объемы производства и его рентабельность. Автомобильный рынок России растет и будет расти еще как минимум несколько лет, а с ним – потребность в эксплуатационных жидкостях. Однако ситуация зависит от региона и многих других факторов.
Здесь невозможно дать точные указания: каждое предприятие должно само оценить риски.
«Ясно одно – десять тонн тосола в месяц – это слишком мало, чтобы в разумный срок получить возврат инвестиций, – рассуждает директор «Комплексных систем» Андрей Караваев. – Порядок 50 тонн в месяц – та планка, от которой надо начинать. Повысить загрузку оборудования можно, выпуская линейку автохимии – два-три варианта антифриза/тосола, стеклоомывающую жидкость, автошампунь». Сроки окупаемости вложений сугубо индивидуальны и могут варьироваться от двух недель до шести месяцев.
Лучше всего, если результатом мониторинга рынка станет договоренность о сбыте готовой продукции. Напоследок заметим, что предприятие, открывающее такое производство, создает новые рабочие места в своем регионе, а потому может получить поддержку государственных инвестиционных программ. Не стоит бояться слов «подвальное производство»: качество готового продукта не будет уступать даже лидирующим производителям, достаточно точно следовать технологии.
Регистрация и организация производственного участка
Производство рассматриваемой автохимии не требует лицензирования, поэтому оформление участка для большинства управленцев будет включать только знакомые процедуры: получение разрешительных документов в пожарной, санитарной и экологической инспекциях; регистрация технических условий в санитарной инспекции; оформление торговой марки.
Цех
Рассмотрим требования контролирующих инстанций к производственному помещению. Оно должно удовлетворять третьему классу пожарной безопасности, что требует назначения ответственного за помещение. Оборудование включает огнетушители, пожарный щит и ящик с песком. Сигнализация не входит в перечень обязательного оснащения. С экологической инспекцией еще проще – производство может быть полностью безотходным, о чем дальше будет сказано подробнее. По санитарным же требованиям помещение придется в обязательном порядке оснастить вытяжкой над установкой и рукомойником.
Насколько большим должен быть цех? Хотя сама установка занимает площадь около 10 кв. м., минимальная рекомендуемая площадь составляет 50 кв. м. Пустые канистры, концентрат и присадки могут храниться в неотапливаемом помещении и даже на открытом воздухе, а отлаженные транспортные потоки допускают территориальное разделение складских и производственных площадей. Однако директор «Комплексных систем» Андрей Караваев считает, что оптимальная площадь – 300-500 кв. м.
Персонал
Обслуживать участок будут, в зависимости от объемов производства, 1-3 человека и более. Уровень подготовки – среднетехническое образование, поскольку при покупке готового бизнес-решения, как в случае ООО «Комплексные системы», технология производства описана в деталях. Четкое соблюдение инструкций гарантирует превышение минимальных показателей ГОСТ в несколько раз.
Замечено, что с разливом готовой продукции лучше справляются женщины – это также следует учитывать при подборе персонала.
Если производительность у вас будет большая то целесообразно приобрести у «Комплексных систем» автоматическую или полуавтоматическую линию для розлива авто жидкостей в тару от 0,5 литров до 10 литров, производительность 2000 литров в час и более
Технология производства
Почему все три группы жидкостей – охлаждающие, стеклоомыватели, шампуни – делаются на одном оборудовании? Дело в том, что технология производства состоит в смешивании в разных пропорциях подготовленной воды, концентрата и пакета присадок. Следует лишь оговориться, что для производства автошампуня на одной установке с тосолом и стеклоомывателем потребуется дополнительный реактор, поскольку промывка оборудования после автошампуня – процесс, затратный по времени.
Обессоленная вода – обязательный компонент для всех трех групп продукции, и технология подразумевает нагрев смеси. Экономию на электроэнергии можно получить, используя пароконденсат ТЭЦ. Если же используется холодная подготовленная вода (система фильтрации), реактор придется дополнительно оборудовать нагревательными элементами и учесть повышенные затраты электроэнергии в себестоимости.
Производство не создает сбросов загрязненной воды. К примеру, при переходе от производства тосола к антифризу воду, использовавшуюся при промывке, можно хранить и использовать при обратном переходе на тосол. Даже проливы, неизбежные при разливе продукции, не особо страшны: оснастив установку поддоном, пролитую жидкость можно собрать, отфильтровать и вернуть в технологический цикл.
Секрет не в уникальной технологии
Учесть все нюансы в рамках одной статьи невозможно, как невозможно начать с нуля бизнес и ни разу не наступить на грабли. Вот почему спросом пользуется не оборудование, а бизнес-решение «под ключ». Если качество поддержки высокое, даже люди, далекие от автомобильного бизнеса, могут добиться успеха с первой попытки.
При всей простоте технологии более половины контрактов на поставку оборудования «Комплексные системы» превратились в постоянных клиентов.
Секрет не в технологии. Просто главный продукт компании – не станки, а знание, как обойти вышеупомянутые грабли.
Белки-антифризы и их практическое применение в промышленности, медицине и сельском хозяйстве
1. Стивенс К.А., Семрау Дж., Чириак Д., Личко М., Кэмпбелл Р.Л., Лангелаан Д.Н., Смит С.П., Дэвис П.Л., Аллингем Дж.С. Циркуляризация пептидного остова повышает термостабильность белка-антифриза, Белковая наука: публикация. Белок Соц. 2017; 26:1932–1941. doi: 10.1002/pro.3228. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Davies P.L. Белки, связывающие лед: замечательное разнообразие структур для остановки и запуска роста льда. Тенденции биохим. науч. 2014;39: 548–555. doi: 10.1016/j.tibs.2014.09.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Bang J.K., Lee J.H., Murugan R.N., Lee S.G. Антифризные пептиды и гликопептиды и их производные: потенциальное использование в биотехнологии. Мар. Наркотики. 2013;11:2013–2041. doi: 10.3390/md11062013.
[бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Воец И.К. От белков, связывающих лед, до антифризов на биологической основе. Мягкая материя. 2017;13:4808–4823. doi: 10.1039/C6SM02867E. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Flores A., Quon J.C., Perez A.F., Ba Y. Механизмы антифризных белков исследованы с помощью метода сайт-направленной спиновой маркировки. Евро. Биофиз. Дж. 2018; 47:611–630. doi: 10.1007/s00249-018-1285-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Kim H.J., Lee J.H., Hur Y.B., Lee C.W., Park S.H. Морские белки-антифризы: структура, функции и применение для криоконсервации в качестве потенциального криопротектора. Мар. Наркотики. 2017;15:27. doi: 10.3390/md15020027. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Balcerzak A.K., Capicciotti C.J., Briard J.G., Ben R.N. Разработка ингибиторов рекристаллизации льда: от белков-антифризов (глико) до малых молекул.
Р. Соц. хим. Доп. 2014;4:42682–42696. doi: 10.1039/C4RA06893A. [CrossRef] [Google Scholar]
8. Laezza A., Casillo S., Cosconati C.I., Biggs A., Fabozzi L., Paduano A., Iadonisi E., Novellino M.I., Gibson A., Corsaro M.M., et al. . Декорирование полисахарида хондроитина треонином: синтез, конформационное исследование и активность ингибирования перекристаллизации льдом. Биомакромолекулы. 2017;18:2267–2276. doi: 10.1021/acs.biomac.7b00326. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Кристиансен Э., Захариассен К.Э. Механизм, с помощью которого антифризные белки рыб вызывают тепловой гистерезис. Криобиология. 2005; 51: 262–280. doi: 10.1016/j.cryobiol.2005.07.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Xiang H., Yang X., Ke L., Hu Y. Свойства, биотехнологии и применение белков-антифризов. биол. макромол. 2020; 153: 661–675. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2020.03.040. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Celik Y., Drori R., Pertaya-Braun N.
, Altan A., Barton T. Микрожидкостные эксперименты показывают, что антифризных белков, связанных с кристаллами льда, достаточно, чтобы предотвратить их рост. . проц. Натл. акад. науч. США. 2013;110:1309–1314. doi: 10.1073/pnas.1213603110. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Кавахара Х. Характеристика функций биологических материалов, обладающих способностью контролировать рост кристаллов льда. Матер. науч. 2012 г.: 10.5772/54535. [CrossRef] [Google Scholar]
13. Hayward J.A., Haymet A.D.J. Поверхность раздела лед/вода: молекулярно-динамическое моделирование базальной, призменной, {2021} и {2110} границ раздела льда Ih. хим. физ. 2001; 114:3713–3726. дои: 10.1063/1.1333680. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
14. Олийве Л.Л., Мейстер К., Де Врис А.Л., Думан Л.Г., Го С., Баккер Х.Дж., Воетс Л.И. Блокирование быстрого роста кристаллов льда за счет небазальной адсорбции белков-антифризов. проц. Натл. акад. науч. США. 2016;113:3740–3745.
doi: 10.1073/pnas.1524109113. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Kuiper M.J., Lankin C., Gauthier S.Y., Walker V.K., Davies P.L. Очистка антифризных белков адсорбцией на льду. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 2003; 300: 645–648. дои: 10.1016/S0006-291Х(02)02900-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Ding X., Zhang H., Chen H.L., Wang H., Qian X. Экстракция, очистка и идентификация белков-антифризов из пивоваренного ячменя, акклиматизированного к холоду ( Hordeum vulgare Л.) Пищевая хим. 2015; 175:74–81. doi: 10.1016/j.foodchem.2014.11.027. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Mao M.G., Chen Y., Liu R.T., Lu H.Q., Gu J. Транскриптом из печени тихоокеанской трески раскрывает типы аполипопротеинов и анализ экспрессии AFP-IV, структурного аналога с ApoA-I млекопитающих, Сравнительная биохимия и физиология. Часть D Геном. протеом. 2018;28:204–212. doi: 10.1016/j.cbd.2018.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
18.
Sharma B., Sahoo D., Deswal R. Одностадийная очистка и характеристика белков-антифризов из листьев и ягод морозостойкого кустарника облепихи ( Hippophae rhamnoides ) Sep. Sci. 2018;41:3938–3945. doi: 10.1002/jssc.201800553. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Cheng J., Hanada Y., Miura A., Tsuda S., Kondo H. Гидрофобные участки связывания со льдом придают гиперактивность антифризного белка гриба снежной плесени. Биохим. J. 2016 doi: 10.1042/BCJ20160543. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
20. Basu K., Garnham C.P., Nishimiya Y., Tsuda S., Braslavsky I. Определение связывающих лед плоскостей белков-антифризов с помощью флуоресцентной аффинности ледяных плоскостей. Вис. Эксп. 2014;83:e51185. дои: 10.3791/51185. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Knight C.A., Cheng C.C., DeVries AL. Адсорбция альфа-спиральных антифризных пептидов на определенных плоскостях поверхности кристаллов льда. Биофиз, Дж. 1991; 59: 409–418. doi: 10.
1016/S0006-3495(91)82234-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Халева Л., Челик Ю., Бар-Долев М., Пертая-Браун Н., Канер А., Дэвис П.Л. Микрожидкостное устройство холодного пальца для исследования белков, связывающих лед. Biophys J. 2016; 111:1143–1150. doi: 10.1016/j.bpj.2016.08.003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Cheng Y., Yang Z., Tan H., Liu R., Chen G., Jia Z. Анализ участков связывания льда у рыб антифризный белок типа II с помощью квантовой механики. Биофиз Дж. 2002; 83: 2202–2210. дои: 10.1016/S0006-3495(02)73980-5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Loewen M.C., Gronwald W., Sönnichsen F.D., Sykes B.D., Davies P.L. Сайт связывания льда антифризного белка морского ворона отличается от сайта связывания углеводов гомологичного лектина С-типа. Биохим. Дж. 1998; 37:17745–17753. doi: 10.1021/bi9820513. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Knight C.A., Hallett J.
, DeVries A.L. Влияние растворенных веществ на рекристаллизацию льда: метод оценки. Криобиология. 1988;21:55–60. doi: 10.1016/0011-2240(88)
-X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Tomczak M.M., Marshall C.B., Gilbert J.A., Davies P.L. Простой метод определения ингибирования рекристаллизации льда антифризными белками. BBRC J. 2003; 311: 1041–1046. doi: 10.1016/j.bbrc.2003.10.106. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Stubbs C., Wilkins L.E., Fayter A.E.R., Walker M., Gibson M.I. Мультивалентная презентация полимеров, ингибирующих рекристаллизацию льда, на наночастицах сохраняет активность. Являюсь. хим. соц. 2018; 35:7347–7353. doi: 10.1021/acs.langmuir.8b01952. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Yu S.-H., Yang P., Sun T., Qi Q., Wang X.-Q., Chen X.M., Фэн Ю. Транскриптомный и протеомный анализ способности к переохлаждению и добыче антифризных белков китайской белой восковой щитовки. наук о насекомых. 2016; 23:430–437. doi: 10.
1111/1744-7917.12320. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Карраско М.А., Бюхлер С.А., Арнольд Р.Дж., Сформо Т., Барнс Б.М. Изучение способности аляскинского жука к глубокому переохлаждению Cucujus clavipes puniceus с помощью высокопроизводительной протеомики. протеом. Дж. 2012; 75:1220–1234. doi: 10.1016/j.jprot.2011.10.034. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Кумар М., Салдана Х., Кумар Р., Бхаттачарья Х., Соуза Н. In-Silco анализ антифризных белков рыб и их физико-химическая характеристика. Чистое приложение. Бионауч. 2018; 1:1392–1398. doi: 10.18782/2320-7051.6354. [CrossRef] [Google Scholar]
31. Wellig S., Hamm P. Спасительный слой антифризных белков анализируется с помощью марковской модели состояния. физ. хим. Дж. 2018; 49: 11014–11022. doi: 10.1021/acs.jpcb.8b04491. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Doxey A.C., Yaish M.W., Griffith M., McConkey B.J. Упорядоченные поверхностные углероды различают белки-антифризы и их участки, связывающие лед.
Нац. Биотехнолог. 2006; 24:852–855. doi: 10.1038/nbt1224. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Кандасвами К.К., Чоу К.С., Мартинец Т., Моллер С., Сугантан П.Н. AFP-Pred: метод случайного леса для прогнозирования белков-антифризов по свойствам, полученным из последовательности. Теор. биол. 2011; 270:56–62. doi: 10.1016/j.jtbi.2010.10.037. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
34. Xiao X., Hui M., Liu Z. iAFP-Ense: ансамблевый классификатор для идентификации антифризного белка путем включения модели Грея и PSSM в PseAAC. член биол. 2016; 249:845–854. doi: 10.1007/s00232-016-9935-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. He X., Han K., Hu J., Yan H., Yang J.Y., Shen H.B., Yu D.J. Целевая заморозка: идентификация белков-антифризов с помощью комбинации весов с использованием информации об эволюции последовательности и псевдоаминокислотного состава. член биол. 2015; 248:1005–1014. doi: 10.1007/s00232-015-9811-з. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36.
Nadu T. Оценка методов предсказания вторичной структуры белка in-silico с использованием статистических методов. Биомед. Биотехнолог. Рез. Ж. 2017; 5:29–36. doi: 10.4103/bbrj.bbrj_28_17. [CrossRef] [Google Scholar]
37. Бхаттачари М., Хота А., Кар А., Чини Д.С., Малик Р.К. In-silico Структурное и функциональное моделирование последовательностей антифризного белка (АФП) морской дужки ( Zoarces americanus , Bloch & Schneider 1801) Жене. англ. Биотехнолог. 2018;16:721–730. doi: 10.1016/j.jgeb.2018.08.004. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Мушараф М.Д. Антифризные белки рыб: вычислительный анализ и физико-химическая характеристика. Междунар. Курс. фарм. 2012; 1:18–26. doi: 10.3329/icpj.v1i2.9412. [CrossRef] [Google Scholar]
39. Идрис С., Надим С., Канвал С., Эхсан Б., Юсуф А., Надим С., Райока М.И. Анализ последовательности in silico, моделирование гомологии и функциональная аннотация Ocimum basilicum гипотетический белок G1CT28_OCIBA.
Биоавтоматизация. 2012;16:111–118. [Google Scholar]
40. Долев Б., Браславский М., Дэвис П.Л. Белки, связывающие лед, и их функции. Анну. Преподобный Биохим. 2016; 85: 515–542. doi: 10.1146/annurev-biochem-060815-014546. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Jia Z., Davies P.L. Белки-антифризы: необычное взаимодействие рецептор-лиганд. Тенденции биохим. науч. 2002; 27:101–106. doi: 10.1016/S0968-0004(01)02028-X. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
42. Чакраборти С., Биман Дж. Необычная история о структурной эволюции, гидратации и функциях. проц. Индийская национальная наука. акад. 2018;1:169–187. doi: 10.16943/ptinsa/2018/49553. [CrossRef] [Google Scholar]
43. Mahatabuddin S., Hanada Y., Nishimiya Y., Miura A. Зависимая от концентрации олигомеризация альфа-спирального антифризного полипептида делает его гиперактивным. науч. 2017;7:42501. doi: 10.1038/srep42501. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Нисимия Ю., Кондо Х.
, Такамичи М., Сугимото Х., Судзуки М., Миура А., Цуда С. Кристаллическая структура и мутационная анализ Са 2+ -независимый антифризный белок II типа длиннорылого браконьера, Brachyopsis rostratus . Мол. биол. 2008; 382: 734–746. doi: 10.1016/j.jmb.2008.07.042. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Рудсари Х., Гофф Х.Д. Ледяные структурирующие белки растений: механизм действия и применение в пищевых продуктах. Еда Рез. 2012; 46: 425–436. doi: 10.1016/j.foodres.2011.12.018. [CrossRef] [Google Scholar]
46. Huang Q., Hu R., Zhu H., Peng C., Chen L. Холодостойкая активность мультидоменного антифризного белка типа III из антарктической бельдюги Lycodrchths deaborni , обнаруженный у трансгенных табаков. Аква. Рыбы. 2019: 1–6. doi: 10.1016/j.aaf.2019.11.006. [CrossRef] [Google Scholar]
47. Sönnichsen F.D., DeLuca C.I., Davies P.L., Sykes B.D., Sönnichsen F.D., DeLuca C.I., Davies P.L., Sykes B.D. Усовершенствованная структура раствора антифриза III типа: гидрофобные группы могут быть вовлечены в энергетику взаимодействия белок-лед.
Состав. 1996; 4: 1325–1337. doi: 10.1016/S0969-2126(96)00140-2. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
48. Урбанчик М., Гора Дж., Латайка Р., Норберт С. Антифризные гликопептиды: от структуры и структуры активности до современных подходов в химическом синтезе. Аминокислоты. 2017;49:209–222. doi: 10.1007/s00726-016-2368-z. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Думан Дж. С. Белки и гликопептиды, связывающие лед животных (белки-антифризы). Эксп. биол. 2015; 218:1846–1855. doi: 10.1242/jeb.116905. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Ye Q., Eves R., Campbell R.L., Davies P.L. В кристаллической структуре белков-антифризов насекомых обнаруживаются упорядоченные воды на связывающей лед поверхности. Биохим. 2020;17:3271–3286. DOI: 10.1042/BCJ20200539. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Брайон А., Вибоу Н., Дермау В. Анализ экспрессии генов в геноме факультативных репродуктивных диапауз у двупятнистого паутинного клеща. БМС Геном.
2013;14:815. дои: 10.1186/1471-2164-14-815. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Гуз Н., Топрак У., Дагери А. Идентификация предполагаемого гена антифризного белка, который сильно экспрессируется во время подготовки к зиме у солнечных вредителей. Физиол насекомых. 2014;68:30–35. doi: 10.1016/j.jinsphys.2014.06.021. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
53. Хон В., Гриффит М., Чонг П., Ян Д.С.К. Экстракция и выделение белков-антифризов из листьев озимой ржи ( Secale злаковый L.). Завод Физиол. Бетесда. 1994; 104: 971–980. doi: 10.1104/стр.104.3.971. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Provesi J.G., Volentim P.A., Arisi A.C.M. Белки-антифризы в естественно акклиматизированных листьях Drimys angustifolia , Senecio icoglossus и Eucalyptus подвид. Пищевая Технол. 2016;19:e2016110. дои: 10.1590/1981-6723.11016. [CrossRef] [Google Scholar]
55. Муньос П.А., Маркес С.
Л., Гонсалес Ф.Д. Структура и применение белков-антифризов антарктических бактерий. микроб. Клеточные фабрики. 2017;16:138–150. doi: 10.1186/s12934-017-0737-2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Устун Н.С., Турхан С. Белки-антифризы: характеристики, механизмы действия, источники и применение в пищевых продуктах. Пищевой процесс. Сохранить 2015;39: 3189–3197. doi: 10.1111/jfpp.12476. [CrossRef] [Google Scholar]
57. Boonsupthip W., Lee T.C. Применение белка-антифриза для консервирования пищевых продуктов: Эффект белка-антифриза III типа для сохранения гелеобразующего замороженного и охлажденного актомиозина. Пищевая наука. 2003; 68: 1804–1809. doi: 10.1111/j.1365-2621.2003.tb12333.x. [CrossRef] [Google Scholar]
58. Пейн С.Р., Янг О.А. Влияние предубойного введения белков-антифризов на качество замороженного мяса. Мясная наука. 1995;41:147–155. doi: 10.1016/0309-1740(94)00073-G. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Ding X.
, Zhang H., Liu W., Wang L., Qian H. Извлечение антифризных белков моркови ( Daucus carota ) и оценка их воздействия на замороженная белая соленая лапша. Технология пищевых биопроцессов. 2014;7:842–852. doi: 10.1007/s11947-013-1101-0. [CrossRef] [Google Scholar]
60. Zhang C., Zhang H., Wang L., Gao H., Guo X.N. Влияние белков-антифризов моркови на консистенцию и свойства замороженного теста и летучих соединений мякиша. Пищевая наука. Технол. 2007;41:1029–1036. doi: 10.1016/j.lwt.2007.07.010. [CrossRef] [Google Scholar]
61. Чжан С., Чжан Х., Ван Л. Влияние антифризных белков моркови ( Daucus carota ) на ферментативную способность замороженного теста. Еда Рез. Междунар. 2007; 40: 763–769. doi: 10.1016/j.foodres.2007.01.006. [CrossRef] [Google Scholar]
62. Панадеро Дж., Рандес Ф., Прието Дж.А. Гетерологическая экспрессия антифризного пептида I типа GS-5 в пекарских дрожжах повышает устойчивость к замораживанию и обеспечивает повышенное газообразование в замороженном тесте.
Агр. Пищевая хим. 2005;53:9966–9970. doi: 10.1021/jf0515577. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Xu H.-N., Huang W., Jia C., Kim Y., Liu H. Оценка водоудерживающей способности и хлебопекарных свойств замороженного теста, содержащего лед структурирование белков озимой пшеницы. Зерновые науки. 2009; 49: 250–253. doi: 10.1016/j.jcs.2008.10.009. [CrossRef] [Google Scholar]
64. Liu M., Liang Y., Zhang H., Wu G., Wang L., Qian H. Получение рекомбинантного антифризного белка моркови с помощью Pichia pastoris GS115 и его криозащитное действие на свойства замороженного теста и качество хлеба. Пищевая наука. Технол. 2018;96:543–550. doi: 10.1016/j.lwt.2018.05.074. [CrossRef] [Google Scholar]
65. Шейх М., Цуда С. Применение белков-антифризов: Практическое использование качественных продуктов из японских рыб. Доп. Эксп. Мед. биол. 2018;13:321–337. doi: 10.1007/978-981-13-1244-1_17. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Фукусима М., Цуда С., Йошизава Ю. Изготовление высокопористого оксида алюминия, полученного методом замораживания желатина с антифризным белком. Являюсь. Керам. соц. 2013;96:1029–1031. doi: 10.1111/jace.12229. [CrossRef] [Google Scholar]
67. Гвак Ю., Пак Дж.И., Ким М., Ким Х.С., Квон М.Дж., О С.Дж., Ким Ю.П., Джин Э.С. Создание антиобледенительных поверхностей путем прямой иммобилизации антифризных белков на алюминии. Нац. науч. Отчет 2015; 5: 1038–1046. doi: 10.1038/srep12019. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Chen Z., Huang C.Y., Zhao M., Yan W., Chien C.W., Chen M., Yang H., Machiyama H., Lin S. Характеристики и возможное происхождение самородного алюминия в отложениях холодного просачивания с северо-востока Южно-Китайского моря. заявл. науч. вычисл. 2011;40:363–370. doi: 10.1016/j.jseaes.2010.06.006. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
69. Gwak I.G., sic Jung W., Kim HJ, Kang S.H., Jin E. Белок-антифриз в антарктических морских диатомовых водорослях, Chaetoceros neogracile. Мар. Биотехнолог. 2010;12:630–639. doi: 10.1007/s10126-009-9250-x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Gwak Y., Jung W., Lee Y., Kim J.S., Kim C.G., Ju J.H., Song C., Hyun J.K., Jin E. Внутриклеточный белок-антифриз из Антарктическая микроводоросль, реагирующая на различные стрессы окружающей среды. FASEB J. 2014; 28:4924–4935. doi: 10.1096/fj.14-256388. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
71. Kreilgaard L., Frokjaer S., Flink J.M., Randolph T.W., Carpenter J.F. Влияние добавок на стабильность рекомбинантного человеческого фактора XIII во время сублимационной сушки и хранения в сухом твердом веществе. Арка Биохим. Биофиз. 1998; 360:121–134. doi: 10.1006/abbi.1998.0948. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Кошик Дж. К., Бхат Р. Почему трегалоза является исключительным стабилизатором белка? Анализ термостабильности белков в присутствии совместимого осмолита трегалозы. биол. хим. 2003; 278:26458–26465. doi: 10.1074/jbc.M300815200. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
73. Учида Т., Нагаяма М., Гохара К. Вязкость раствора трегалозы при низких температурах, измеренная методом динамического светорассеяния: трегалоза подавляет перенос молекул для роста кристаллов льда. Дж. Крист. Рост. 2009; 311:4747–4752. doi: 10.1016/j.jcrysgro.2009.09.023. [CrossRef] [Google Scholar]
74. Фикриг Э., Эйзинг М., Абрахам Н., Нилаканта Г. Противоинфекционные свойства белка-антифриза. 10792332B2. Патент США. 2020 6 октября;
75. Heisig M., Agaisse H., Fikrig E. Антивирулентные свойства белка-антифриза. Клеточный пресс. 2014;9: 417–424. doi: 10.1016/j.celrep.2014.09.034. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76. Ярели М., Рамос Л. Биология выживания клеток на холоде: Основы биосохранения тканей и органов. Доп. Биоконсерв. 2010;96:15–62. [Google Scholar]
77. Абрахам Н.М., Лю Л., Ютрас Б.Л., Мерфин К., Акар А., Яровинский Т.О., Саттон Э., Хейзиг М., Якобс-Вагнер К. Антивирулентный белок клеща усиливает действие антибиотиков против Золотистый стафилококк . Антимикроб. Агенты Чемотер. 2017; 61 doi: 10.1128/AAC.00113-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78. Ли Дж., Ким С.К., Юм Х.В., Ким Х.Дж., Ли Дж.Р. Влияние трех различных типов белков-антифризов на криоконсервацию и трансплантацию ткани яичников мышей. ПЛОС ОДИН. 2015;10:1371–1385. doi: 10.1371/journal.pone.0126252. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Kuwayama M., Vajta G., Kato O., Labo S. Высокоэффективный метод витрификации для криоконсервации ооцитов человека. Воспр. биомед. В сети. 2005; 11: 300–308. doi: 10.1016/S1472-6483(10)60837-1. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
80. Кратохвилова И., Копечная О., Бачикова А., Пагачова Е., Фалькова И., Эллиотт С.Е. Изменения ядер криоконсервированных клеток служат индикаторами процессов при замораживании и оттаивании. Ленгмюр. 2019; 35:7496–7508. doi: 10.1021/acs.langmuir.8b02742. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Yang J., Pan C., Zhang J., Sui X. , Zhu Y., Wen C., Zhang L. Изучение потенциала биосовместимых осмопротекторов как высокоэффективных криопротекторы. Являюсь. хим. науч. заявл. Матер. 2017;9: 42516–42524. doi: 10.1021/acsami.7b12189. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
82. Карпентер Ф.Дж., Хансен Т.Н. Белок-антифриз модулирует выживаемость клеток во время криоконсервации: опосредование через влияние на рост кристаллов льда. Физиология. 1992; 89: 8953–8957. doi: 10.1073/pnas.89.19.8953. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
83. Harding M.M., Anderberg P.I., Haymet A.D.J. Гликопротеин «антифриз» полярных рыб. Биохим. 2003; 270:1381–1392. [PubMed] [Академия Google]
84. Ван Дж.Х. Всесторонняя оценка эффектов и механизмов антифризных белков при низкотемпературном хранении. Криобиология. 2000;41:1–9. doi: 10.1006/cryo.2000.2265. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
85. Lee J.R., Youm H.W., Lee H.J., Suh C.H.S. Влияние антифризного белка на криоконсервацию и трансплантацию ткани яичника. Йонсей Мед. Дж. 2015; 56: 778–784. doi: 10.3349/ymj.2015.56.3.778. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
86. Лян С., Юань Б., Квон Дж. В., Ан М., Цуй Х. С., Банг Дж. К., Ким Н. Х. Влияние добавок антифризного гликопротеина 8 во время витрификации на способность к развитию бычьих ооцитов. Териогенология. 2016;86:485–494.e1. doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.01.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
87. Багис Х., Актопраклигил Д., Меркан Х.О., Юрдусев Н., Тургут Г., Секмен С., Арат С., Цетин С. Стабильная передача и транскрипция ньюфаундленда Ген антифризного белка (АФП) рыбы океанской дудки типа III у трансгенных мышей и гипотермическое хранение трансгенных яичников и семенников. Мол. Воспр. Дев. 2006;73:1404–1411. doi: 10.1002/mrd.20601. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
88. Джо Дж.В., Джи Б.К., Су К.С., Ким С.Х. Благотворное влияние белков-антифризов на витрификацию незрелых ооцитов мышей. ПЛОС ОДИН. 2012;7:e37043. doi: 10.1371/journal. pone.0037043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
89. Джо Дж.В., Джи Б.К., Ли Дж.Р., Сух С. Влияние среды для инвитрификации с добавками антифризного белка на способность мышиных ооцитов к развитию. Плодородный. Стерильно. 2011;96:1239–1245. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.08.023. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
90. Чавес Д.Ф., Кампело И.С., Силва М., Бхат М.Х., Тейшейра Д.И.А., Мело Л.М., Соуза-Фабджан Дж.М.Г., Мермиллод П., Фрейтас В.Дж.Ф. Использование антифриза типа III для витрификации созревших in vitro ооцитов крупного рогатого скота. Криобиология. 2016;73:324–328. doi: 10.1016/j.cryobiol.2016.10.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
91. Zandiyeh S., Ebrahimi F., Sabbaghian M. Применение белка-антифриза при криоконсервации спермы. Малиновый паблик. 2018;1:22–34. doi: 10.31031/PRM.2018.01.000520. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
92. Zilli L., Beirão J., Schiavone R., Herraez M.P., Gnoni A. Сравнительный протеомный анализ криоконсервированных жгутиков и белка головной плазматической мембраны сперматозоидов морского леща: влияние антифризного белка. ПЛОС ОДИН. 2016;9:e99992. doi: 10.1371/journal.pone.0099992. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
93. Qadeer S., Khan M.A., Ansari M.S., Rakha B.A., Ejaz R., Iqbal R., Younis M., Ullah N., DeVries A.L. Эффективность антифризных гликопротеинов для криоконсервации Нили-Рави ( Bubalus bubalis ) сперма быка буйвола. Аним. Воспр. науч. 2015; 157:56–62. doi: 10.1016/j.anireprosci.2015.03.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
94. Кадир С., Хан М.А., Ансари М.С., Ракха Б.А., Эджаз Р., Хусна А.У., Ашик М., Икбал Р., Улла Н., Ахтер С. Оценка антифризного белка III для криоконсервации спермы буйволиного быка NiliRavi (Bubalus bubalis). Аним. Воспр. науч. 2014; 148:26–31. doi: 10.1016/j.anireprosci.2014.04.013. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
95. Shaliutina-Kolešová A., Dietrich M., Xian M., Nian R. Влияние трансферрина семенной плазмы на криоконсервированную сперму карпа Cyprinus carpio и сравнение с бычьим сывороточным альбумином и антифризными белками. Аним. Воспр. науч. 2019;204:125–130. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.03.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
96. Martinez-Paramo S., Barbosa V., Perez-Cerezales S., Robles V., Herraez M.P. Криопротекторные эффекты белков-антифризов, доставленных в эмбрионы рыбок данио. Криобиология. 2009 г.;58:128–133. doi: 10.1016/j.cryobiol.2008.11.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
97. Амир Г., Рубинский Б., Кассиф Ю., Горовиц Л., Смолинский А.К., Лави Дж. Сохранение структуры миоцитов и целостности митохондрий при низкотемпературной криоконсервации сердец млекопитающих для трансплантация с использованием белков-антифризов — исследование с помощью электронной микроскопии. Евро. доц. Кардио-Торак. Surg. 2003; 24: 292–296. doi: 10.1016/S1010-7940(03)00306-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
98. Амир Г., Горовиц Л., Рубинский Б., Юсиф Б.С., Лави Дж., Смолинский А.К. Незамерзающая криоконсервация сердец крыс при отрицательных температурах с использованием антифризного протеина I и антифризного протеина III. Криобиология. 2004; 48: 273–282. doi: 10.1016/j.cryobiol.2004.02.009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
99. Амир Г., Рубинский Б., Горовиц Л., Миллер Л., Леор Дж., Кассиф Ю., Мишали Д., Смолинский А.К., Лави Дж. Продлен 24 -часовая консервация гетеротопически трансплантированных крысиных сердец при температуре ниже нуля с использованием белков-антифризов, полученных из арктических рыб. Анна. Торак. Surg. 2004; 77: 1648–1655. doi: 10.1016/j.athoracsur.2003.04.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
100. Muldrew K., Rewcastle J., Donnelly B.J., Saliken J.C., Liang S., Goldie S., Olson M., Baissalov R., Sandison G. Антифризные пептиды Flounder повысить эффективность криохирургии. Криобиология. 2001; 42: 182–189.. doi: 10.1006/cryo.2001.2321. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
101. Багис Х., Аккоч Т., Тасс А., Ктопраклигил Д.А. Криогенное действие белка-антифриза на яичники трансгенных мышей и получение живого потомства путем ортотопической трансплантации криоконсервированных яичников мышей. Мол. Воспр. Дев. 2008; 74: 608–613. doi: 10.1002/mrd.20799. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
102. Фернанда П.С., Хоакин И.Р., Грейтер С.П., Браво Л.А. Свойства и биотехнологические применения белков, связывающих лед, у бактерий, Экологическая микробиология. ФЭМС. J. 2016; 363 doi: 10.1093/женщина/fnw099. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
103. Jing T., Wang P., Gao X. Определение следов тетрациклиновых антибиотиков в пищевых продуктах с помощью жидкостной хроматографии и масс-спектрометрии в сочетании с селективной твердофазной экстракцией с молекулярным отпечатком. Анальный. Биоанал. хим. 2009; 393:2009–2018. doi: 10.1007/s00216-009-2641-z. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
104. Jolly M., Attard E., Sancelme M. Ледяная нуклеационная активность бактерий, выделенных из облачной воды. Окружающая среда атомов. 2013;74:392–400. doi: 10.1016/j.atmosenv.2013.01.027. [CrossRef] [Google Scholar]
105. Катлер А.Дж., Салим М., Кендалл Э., Густа Л.В., Джордж Ф. , Флетчер Г.Л. Антифризный белок зимней камбалы повышает холодостойкость тканей растений. Завод Физиол. 1989; 135: 351–354. doi: 10.1016/S0176-1617(89)80131-2. [CrossRef] [Google Scholar]
Антифризные белки рыб
Рыбные антифризные белкиМолекулы антифриза позволяют ледяной рыбе жить при минусовой температуре воды, закупоривая промежутки в существующих мелких кристаллах льда и предотвращая присоединение большего количества молекул льда. Таким образом, рост кристаллов льда эффективно остановился.
Чтобы выжить, антарктические рыбы выработали белки, действовать как антифриз. Эти белки-антифризы представляют собой группу уникальных макромолекулы, которые помогают некоторым полярным и субполярным морским костистым рыбам избегать замерзания в их ледяной среде обитания. Белки были обнаружены доктор Арт ДеВрис из рыбы, которую он поймал на станции Мак-Мердо. когда он был аспирантом Стэнфордского университета в начало 1960-х.
Воды Южного океана настолько холодны, что умеренный и тропический
рыба замерзла бы, если бы ее поместили в эту среду. Наличие соли в морской воде позволяет ей оставаться жидкой до
около -1,9С, что почти на 2 градуса ниже температуры замерзания
пресноводный. Белки-антифризы вместе с нормальными солями тела,
понизить точку замерзания крови и биологических жидкостей до 2,5°С, слегка
ниже точки замерзания морской воды. Эти белки связываются с
и подавляют рост кристаллов льда в жидкостях организма посредством
процесс всасывания-торможения. Белки прикрепляются к небольшим
кристаллов льда, останавливая их рост. Этот механизм, подавляющий
дальнейший рост ледяного кристалла остается предметом изучения, но, по-видимому,
Антарктические рыбы могут выжить с очень маленькими кристаллами льда
присутствуют в жидкостях их организма.
Может быть несколько коммерческих применений этих антифризов.
белки. Эти соединения примерно в 300 раз более эффективны в
предотвращения замерзания, чем обычные химические антифризы при
одинаковые концентрации. Эффективность рыбьего антифриза
белков в ингибировании роста льда предполагает, что они могут быть
используется для предотвращения замерзания пищи и травм от обморожения в нескольких
Приложения.